banner

Новости

Aug 18, 2023

Состав микробного сообщества пищевых отходов до анаэробного сбраживания

Том 13 научных отчетов, номер статьи: 12703 (2023) Цитировать эту статью

1 Альтметрика

Подробности о метриках

Анаэробное сбраживание широко используется для переработки и извлечения пользы из пищевых отходов. Коммерческие предприятия по анаэробному сбраживанию пищевых отходов стремятся повысить эффективность процесса, чтобы обеспечить более высокую производительность. Информация о составе микробных сообществ пищевых отходов до их переработки ограничена, что ограничивает рациональное использование каталитического потенциала микроорганизмов в процессах предварительной обработки. Чтобы восполнить этот пробел в знаниях, бактериальные и грибковые сообщества в образцах пищевых отходов из коммерческого предприятия по анаэробному сбраживанию в течение 3 месяцев характеризовались. Обилие бактериальных генов 16S рРНК было примерно на пять порядков выше, чем обилие последовательности грибкового межгенного спейсера (ITS), что позволяет предположить численное доминирование бактерий над грибами в пищевых отходах до анаэробного переваривания. Представлены доказательства массового размножения бактерий в пищевых отходах при хранении до анаэробного сбраживания. Состав бактериального сообщества со временем меняется, но линии семейства Lactobacillaceae неизменно доминируют. Содержание азота и pH коррелируют с вариациями сообщества. Эти результаты закладывают основу для понимания микробной экологии пищевых отходов и открывают возможности для дальнейшего улучшения производительности анаэробного сбраживания.

В 2017 году во всем мире было произведено 2 миллиарда тонн твердых бытовых отходов. При этом 84% было собрано, и только 15% было переработано1. Примерно 60% этого потока отходов являются органическими2 и могут подвергаться анаэробному переработке для получения энергии. Согласно отчету правительства Австралии об образовании отходов за 2018 год, 87% пищевых отходов было выброшено на свалку, что создало проблемы со свалочным газом и фильтратом. Только 1% пищевых отходов направлялся на предприятия по рекуперации энергии3. Неправильное обращение с органической фракцией бытовых отходов может привести к образованию парниковых газов, свалочного фильтрата и других вредных продуктов в результате неконтролируемого разложения органических отходов4, 5. Свалочный газ и фильтрат вредны для окружающей среды и вызывают проблемы безопасности6, 7. Разработано анаэробное сбраживание (АД) органических отходов может снизить нагрузку на свалки за счет сбора биогаза и питательных веществ из органических отходов. В этом исследовании основное внимание уделяется доле пищевых отходов в потоке органических отходов.

Анаэробное пищеварение основано на микроорганизмах, которые разлагают органические вещества в отсутствие кислорода8. Процесс пищеварения включает четыре стадии (гидролиз, ацидогенез, ацетогенез и метаногенез), каждая из которых осуществляется разными группами микроорганизмов. Сложные пищевые матрицы внеклеточно гидролизуются до более простых соединений, затем подкисляются и ацетифицируются, которые затем в конечном итоге ферментируются бактериями до ацетата, углекислого газа и дигидрогена9. Эти продукты затем служат субстратами для производства метана метаногенными архей10. Коммерческие системы анаэробного сбраживания оптимизировались на протяжении десятилетий с упором на более высокие выходы биогаза, более высокое соотношение метана: углекислого газа и более низкие выходы остаточных твердых веществ11. Редко уделялось внимание увеличению производительности варочного котла, несмотря на экономический компромисс, который может предложить увеличенная загрузочная способность12. Это удивительно, учитывая, что большая часть доходов предприятий AD поступает от платежей за вывоз пищевых отходов. Таким образом, увеличение скорости загрузки варочного котла повышает финансовую рентабельность таких предприятий и позволяет отводить больше органических отходов со свалок.

Пища имеет связанное с ней микробное сообщество и очень восприимчива к абиотическому разложению и биоразложению. Гибель начинается, как только пища собирается, обрабатывается или производится. Установки анаэробного сбраживания получают пищевые отходы на ранней стадии разложения от все более активного местного микробного сообщества13. Несмотря на потенциал микробного сообщества, свойственного пищевым отходам, играть роль в последующем анаэробном сбраживании, имеются ограниченные данные о микробном сообществе сырья пищевых отходов (пищевые отходы до анаэробного сбраживания) для предприятий AD. Например, неизвестно разнообразие и однородность бактериальных и грибковых сообществ в пищевых отходах, а также то, как на состав микробного сообщества влияют параметры окружающей среды, такие как pH, содержание воды и содержание элементов. Учитывая, что состав пищевых отходов может различаться, разумно ожидать, что состав микробного сообщества также варьируется, хотя это никогда не исследовалось.

 40% of community) were kept for further correlation calculations. Similarly, the analysis of the community of fungi included the four most abundant species. GraphPad Prism 9 was used to analyse the correlation between environmental parameters and variances in community structure. Correlations are examined using nonparametric Spearman correlations to cover more than linear relations and to generate heat maps. The P values were calculated with the student t-test in Prism 9./p> 70% relative abundance of bacteria community, Fig. 3a,b) under comparable conditions and estimates of available growth substrates (Supplement information 1). The model was used to determine whether the residence time between the hydropulper and the digestor feed tank (~ 16 h) was sufficient to account for the observed 26-fold increase in bacterial abundance. From a starting point of 6.2 × 108 copies/g, the model reached a 16S rRNA gene copy density of 1 × 1010 copies/g after 16 h and plateaued at 1.3 × 1010 copies/g after 18 h. Growth model data and qPCR data are consistent with the proliferation of bacteria in food waste between the hydropulper and the anaerobic digestor feeding tank./p> 1% relative abundance (Lin1-7). Minor Lactobacillaceae include all Lactobacillaceae lineages with less than 1% relative abundance. Lin 1–3 on the graphs correspond to Lactobacillus/Lactiplantibacillus Lin1-3 in the legend. (c) Maximum likelihood phylogenetic tree of Family Lactobacillaceae extracted from the Illumina 16S rRNA Illumina sequence entries (Lin1-7 indicated by solid circle). Number and scale in figure showing the phylogenetic relationship between bacterial lineages observed in food waste and their closest cultured relatives. Numbers represent bootstrap (branch point confidence) values from 500 replicates./p>

ДЕЛИТЬСЯ